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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Niveles de resistencia a quinolonas y otros antimicrobianos en cepas de Escherichia coli comensales en niños de la zona periurbana de Lima, Perú]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The main aim of this study was to establish the resistance levels to antimicrobial agents, in 222 non-pathogenic E. coli strains of fecal origin in Peru. The proportion of resistance found to the evaluated antimicrobials was ampicillin (62.6%), cotrimoxazole (48,6%), tetracycline (43,0%) and chloramphenicol (15,8%). We emphasize the high resistance levels found for quinolones: 32% for nalidixic acid (NAL) and 12% for ciprofloxacin (CIP). These high levels of quinoloneresistance in non-pathogenic strains isolated from children in this age group highlight the extensive use and the impact of the intake of this kind of antimicrobials in the community, showing the potential risk of the loss of their utility in the area.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><b><font size="2" face="Verdana">ORIGINAL BREVE</font></b></p>      <p align="justify"><b><font size="4" face="Verdana">   Niveles de resistencia a quinolonas y otros antimicrobianos en cepas de <i>Escherichia coli</i> comensales en niños de la zona periurbana de Lima, Perú</font></b></p>      <p align="justify"><b><font size="3" face="Verdana">   Levels of quinolones resistance and other antimicrobial in non-pathogenic   <i>Escherichia coli</i> strains in children from the periurban area of Lima, Peru</font></b></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">   María J. Pons<sup>1,a</sup>, Susan Mosquito<sup>2,b</sup>, Theresa J. Ochoa<sup>2,3, c</sup>, Martha Vargas<sup>4,d</sup>,   Margarita Molina<sup>5,e</sup>, Angela Lluque<sup>2,b</sup> , Ana I. Gil<sup>5,e</sup>, Lucie Ecker<sup>5,f</sup>, Francesca Barletta<sup>2,g</sup> ,   Claudio F. Lanata<sup>5,6,f</sup>,   Luis J. Del Valle<sup>7,d</sup>, Joaquim Ruiz<sup>1,8,d</sup></font></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   1 Barcelona Centre fot International Health Researh (CRESIB, Hospital Clinic-Universitat   de Barcelona). Barcelona, España.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   2 Instituto de Medicina Tropical, Universidad Peruana Cayetano Heredia. Lima,   Perú.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   3 University of Texas School of Public Health. Houston, EE.UU.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   4 Institut d’Investigacions Biomèdiques August Pi i Sunyer (IDIBAPS), Hospital   Clínic. Barcelona, España.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   5 Instituto de Investigación Nutricional. Lima, Perú</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   6 Escuela de Medicina, Universidad Peruana de Ciencias Aplicadas. Lima, Perú.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   7 Departament d’Enginyeria Química, ETSEIB, Universitat Politècnica de Catalunya.   Barcelona, España.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   8 CIBER Epidemiología y Salud Pública (CIBERESP). Barcelona, España.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   a Bióloga, magister en biomedicina; b bióloga, magister en Microbiología; c   médico, pediatra infectólogo; d biólogo, posdoctorado en biología;   e microbióloga; f médico epidemiólogo; g bióloga molecular</font></p>  <hr>      <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">   RESUMEN</font></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   El objetivo principal del estudio fue establecer el nivel de resistencia a   antimicrobianos en un total de 222 cepas   comensales de <i>E. coli</i> de origen fecal, en Perú. Las frecuencias de resistencia   encontrados, frente los antimicrobianos   evaluados, fueron: ampicilina (62,6%), cotrimoxazol (48,6%), tetraciclina   (43,0%) y cloranfenicol (15,8%). Destacan los   elevados niveles de resistencia a quinolonas: 32% al ácido nalidíxico (NAL) y   12% a ciprofloxacino (CIP). Estos elevados   niveles hacia las quinolonas en cepas comensales aisladas en niños de esta   franja de edad, realzan el uso extendido   y el impacto de consumo de este tipo de antimicrobianos en la comunidad,   mostrando el riesgo potencial de su pérdida   de utilidad en el área.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   <b>Palabras clave:</b> Pruebas de sensibilidad microbiana; Quinolonas; <i>Escherichia coli</i>;   Bacterias fecales (fuente: DeCS   BIREME).</font></p>  <hr>      <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">   ABSTRACT</font></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   The main aim of this study was to establish the resistance levels to   antimicrobial agents, in 222 non-pathogenic <i>E. coli</i>   strains of fecal origin in Peru. The proportion of resistance found to the   evaluated antimicrobials was ampicillin (62.6%),   cotrimoxazole (48,6%), tetracycline (43,0%) and chloramphenicol (15,8%). We   emphasize the high resistance levels   found for quinolones: 32% for nalidixic acid (NAL) and 12% for ciprofloxacin (CIP).   These high levels of quinoloneresistance   in non-pathogenic strains isolated from children in this age group highlight the   extensive use and the impact of   the intake of this kind of antimicrobials in the community, showing the   potential risk of the loss of their utility in the area.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   <b>Key words:</b> Microbial sensitivity tests; Quinolones; <i>Escherichia coli</i>; Fecal   bacteria (source: MeSH NLM).</font></p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">   INTRODUCCIÓN</font></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">      Desde la introducción de la penicilina en la práctica   clínica, en la década de 1940, los antimicrobianos   han sido usados para el tratamiento de enfermedades   infecciosas. Desafortunadamente las bacterias han   desarrollado resistencia a todos los antimicrobianos   conocidos hasta el momento. Actualmente la resistencia   a antimicrobianos, sobre todo la presencia de   multirresistencia, es considerada uno de los problemas   de salud de mayor relevancia a nivel mundial según la   OMS (1) .</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Las quinolonas son una familia de antimicrobianos que   fueron introducidos a la práctica clínica en 1967. Desde   ese momento, debido a su amplio espectro de actividad,   su uso se extendió rápidamente siendo actualmente uno   de los antimicrobianos más prescritos a nivel mundial (2).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Clásicamente estos antimicrobianos no han sido usados   para tratar infecciones en niños, pero en informes   recientes se muestra su seguridad en este grupo de   edad (3). El mecanismo de resistencia más relevante   frente a las quinolonas es la presencia de substituciones   específicas en las dianas (2), aunque, en los últimos 10   años se han descrito varios mecanismos transferibles   de resistencia a quinolonas (4).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   La presencia de microorganismos comensales   resistentes a antimicrobianos puede deberse a la presión   directa del propio consumo de antimicrobianos o puede   que, de manera alternativa, se deba a la adquisición   de microorganismos resistentes. La <i>Escherichia coli</i> es   un miembro típico de la microbiota intestinal, tanto en   humanos como en animales (5). Por ello, el análisis de   los niveles de resistencia a antimicrobianos en cepas   de <i>E. coli</i> comensales es un modelo válido para estimar   el impacto del uso general de antimicrobianos en una   área específica y una aproximación adecuada para   predecir la evolución de la resistencia a quinolonas en   la comunidad.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   El objetivo del presente trabajo es analizar los niveles   de resistencia a antimicrobianos en <i>E. coli</i> comensales   aislados de niños peruanos de hasta doce meses.</font></p>      <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">   EL ESTUDIO</font></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Se realizó un estudio transversal de vigilancia de la   diarrea infantil, donde se incluyeron muestras fecales   recogidas entre octubre de 2006 y noviembre de 2007   de niños con diarrea (&#8805; 3 deposiciones líquidas o   semilíquidas en menos de 24 h o &#8805; 1 deposición con   sangre) y controles (niños sanos que no hubiesen   presentado diarrea una semana antes y una después de   la recogida de la muestra) de 2 a 12 meses de edad (6).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Para este subestudio de sensibilidad antimicrobiana,   se utilizó las muestras de los niños sanos. Entraron en   este grupo un total de 560 niños entre los 2 a 12 meses   de edad, de los cuales se obtuvieron muestras fecales   cada mes (6).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   De cada muestra de heces sembrada en medio   Mc Conkey, se recuperaron cinco colonias lactosa   positivas susceptibles de ser <i>E. coli</i>. Las colonias fueron   identificadas por métodos bioquímicos convencionales   y se descartó la presencia de <i>E. coli</i> diarrogénicas   empleando real time PCR descrita en un estudio   previo (6), se seleccionó así las E.coli comensales. De   todas aquellas muestras con <i>E. coli</i> comensales, se   seleccionaron 222 cepas provenientes de 222 niños   analizados en este estudio.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Se estableció la sensibilidad a ampicilina (AMP),   amoxicilina más ácido clavulánico (AMC), cefotaxima   (CTX), ceftazidima (CAZ), gentamicina (GEN), ácido   nalidixico (NAL), ciprofloxacino (CIP), tetraciclina   (TET), cloranfenicol (CHL), cotrimoxazol (SXT) y   nitrofurantoina (NIT) mediante la técnica de difusión en   disco, según la guía del Clinical and Laboratory and   Standards Institute (CLSI) (7). También se estableció la   sensibilidad a azitromicina en 207 aislados usando la   misma técnica.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   La multirresistencia se definió como presencia de   resistencia a tres o más agentes antimicrobianos   no relacionados entre sí, excluyendo el caso de la   azitromicina, debido a la falta de puntos de corte para   Enterobacteriaceae (7). Es por este mismo motivo por lo   que la azitromicina se excluyó para las determinaciones   de los perfiles de resistencia.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Se establecieron dos grupos para un mejor análisis de   los resultados, un primer grupo con niños de edades   comprendidas entre 0 y 6 meses y un segundo de   mayores de 6 a 12 meses. Se usó la prueba de Fisher   para el análisis estadístico de los resultados.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Se establecieron los diferentes fenotipos de sensibilidad   a quinolonas, usando los puntos de corte recomendados   por el CLSI, concretamente para NAL es resistente   &#8804; 13 mm, intermedia 14-18, sensible &#8805; 19 mm y para   CIP resistente &#8804; 15 mm, intermedia 16-18, sensible &#8805;   21 mm.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Se describen los datos con frecuencias y porcentajes,   procesados en una hoja de cálculo en Excel 2010.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Los niños escogidos entraron en el estudio después de   que su responsable firmara el consentimiento informado.   El estudio fue revisado y aprobado por el Comité de   Ética del Instituto de Investigación Nutricional y de la   Universidad Peruana Cayetano Heredia, Lima, Perú.</font></p>      <p align="justify"><i><font size="2" face="Verdana">   HALLAZGOS</font></i></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   En los resultados de sensibilidad obtenidos (<a href="#tab01">Tabla 1</a>),   se observaron elevados niveles de resistencia a AMP   (62,6%), SXT (48,6%) y TET (43,0%), mientras que   la resistencia fue menos elevada a CHL (15,8%) y   GEN (10.4%). Los niveles al resto de antimicrobianos   testados fue menor al 10%.</font></p>      <p align="justify"><a name="tab01"></a></p>      <p align="center">      <a href="/img/revistas/rpmesp/v29n1/a12tab01a.jpg">  <img src="/img/revistas/rpmesp/v29n1/a12tab01.jpg" border="1"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">                                                                     Al realizar el análisis por edad, se observó que los   niveles de resistencia a SXT eran significativamente   mayores en el grupo de niños mayores de 6 a 12   meses, comparado con el grupo de menor edad   (p&lt;0,05).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   En el caso de la azitromicina se agrupó por el tamaño del   diámetro de inhibición. En trece aislados (6,3%) no se   observó halo, mientras que en diez (5,3%) y cuarentidós   (20,3%) aislados mostraban halo menor de 10 mm o   comprendido entre 11 a 15 mm respectivamente. El   resto de aislados analizados comprendían diámetros   entre 16 y 20 mm (61/207, 28%) o mayor que 20 mm   (90/207, 41,3%).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Cabe destacar los elevados niveles de resistencia   a NAL (32,0%), así como, en menor número, a CIP   (12,2%). La presencia de resistencia a NAL pero   sensibilidad o resistencia intermedia a CIP fue   detectada en cuarentidós (18,9%) y dos (0,9%) cepas   respectivamente. Se encontraron cinco (2,3%) aislados   que presentaban resistencia intermedia a NAL. No se   encontró ningún aislado que presentara resistencia a   CIP y fuese sensible o con resistencia intermedia a NAL   (<a href="#tab02">Tabla 2</a>).</font></p>      <p align="justify"><a name="tab02"></a></p>      <p align="center">      <img src="/img/revistas/rpmesp/v29n1/a12tab02.jpg"></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">                                                                  Se detectó multirresistencia en noventiún aislados   (91/222, 41,0%). Además, se encontraron cepas   que presentaban resistencia intermedia a diferentes   antimicrobianos. De estos aislados, la mayoría exhibían   resistencia intermedia a AMC.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Se observaron un total de 81 perfiles de resistencia,   los encontrados con mayor frecuencia fueron los   “pansusceptible” (sensibles a todos los antimicrobianos   evaluados; <a href="#tab03">Tabla 3</a>). El resto de perfiles de resistencia   encontrados tenían menos de diez aislados cada uno   (&lt;5% de todos los aislados).</font></p>      <p align="justify"><a name="tab03"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">      <img src="/img/revistas/rpmesp/v29n1/a12tab03.jpg"></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">                                                DISCUSIÓN</font></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   El uso de las quinolonas, a pesar de demostrarse su   seguridad en niños (3), se limita a situaciones y usos   específicos, en Perú no es una excepción. De este   hecho, y debido a la falta de datos de consumo de   antimicrobianos, se infiere que los elevados niveles de   resistencia a quinolonas, descritos en las cepas de este   estudio, no son por la presión directa después de un   tratamiento, sino a razones externas.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   En un estudio reciente, realizado en una comunidad   alejada de la Amazonía peruana, donde el uso de   antimicrobianos es limitado, no se encontraron   microorganismos aislados de <i>E. coli</i> resistentes a   quinolonas, ni en niños ni en adultos (8). Este hecho   sugiere que la resistencia a quinolonas, descrita en   el presente estudio, se debería a la fuerte influencia   de la exposición a los antimicrobianos de manera   persistente. Así, la resistencia a quinolonas se podría   considerar como un buen marcador de la exposición a   los antimicrobianos.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Los presentes resultados sugieren un gran uso de estos   antimicrobianos en la comunidad. Este hecho podría   haber originado la selección de aislados resistentes   a quinolonas, los cuales habrían sido adquiridos por   los niños e incorporados como parte de su microbiota   intestinal comensal. Por tanto, probablemente las <i>E. coli</i> comensales resistentes a quinolonas observadas,   fueron adquiridas directamente del entorno familiar.   Existen estudios previos en otra zona periurbana de Lima   que muestran aislados de <i>E. coli</i> de adultos voluntarios   sanos, que presentaban niveles de resistencia   a ciprofloxacino superiores al 30% (9). Además,   actualmente se puede comprar antimicrobianos sin   prescripción, de donde se puede derivar con facilidad   a tratamientos y posologías incorrectas, siendo ambos   factores favorecedores para la aparición y selección de   resistencias a antimicrobianos. Por último, debemos   señalar los elevados niveles de resistencia a quinolonas   que se han detectado en microorganismos procedentes   de piscifactorías (10). Estos datos reflejan los elevados   niveles de uso de las quinolonas y sugieren un rol   relevante de la cadena alimentaria en la diseminación   de la resistencia en el área.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   El uso inapropiado de estos antimicrobianos y   la aparición de resistencias, no está limitado a   microorganismos comensales sino que también es   extensible a microorganismos patogénicos, resultando   en una pérdida de su potencial para tratar distintas   infecciones. Dando soporte a estas afirmaciones, se   han descrito altos niveles de resistencia a quinolonas en   <i>E. coli</i> diaerrogénicas en la misma área (11,12).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Es necesario destacar los elevados niveles de resistencia   encontrados en estas cepas comensales y así como en   diaerrogénicas de la misma cohorte (12), frente a otros   antimicrobianos de uso frecuente en pediatría, como   son AMP, SXT, entre otros, lo cual sugiere la necesidad   urgente de búsqueda de tratamientos alternativos   eficaces. Por el momento otros antimicrobianos, como   el caso de la azitromicina, se han añadido a la lista   para tratar la diarrea. Desafortunadamente, el presente   estudio también muestra aislados resistentes a AZM en   la zona.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Estos datos elevados de resistencias a antimicrobianos   se podrían relacionar con datos de un estudio realizado   en ocho países de América Latina, en el que se describe   la evolución del consumo de antimicrobianos en la   población, entre 1997 y 2007, donde se observa a Perú   como uno de los países donde se había incrementado el   consumo de antimicrobianos (13).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   En el resto de antimicrobianos analizados, no   pertenecientes al grupo de las quinolonas, la resistencia   sería atribuible a presión directa a la que están sometidas   las <i>E. coli</i> comensales. Los niveles significativamente   más elevados de resistencia a SXT en niños entre 7 y 12   meses apoya esta posibilidad, dado que este es uno de los   antimicrobianos más extensamente usados para tratar   infecciones infantiles. Sin embargo, los mecanismos   de resistencia más frecuentemente descritos frente a   estos antimicrobianos están localizados en elementos   móviles (14) y, por tanto, no se debe descartar un origen   exógeno de la adquisición de mecanismos moleculares   de resistencia.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Previos informes nos muestran cierto grado de clonalidad   en cepas de E.coli comensales, realizados en pequeñas   comunidades aisladas. A pesar de que los perfiles de   resistencia a antimicrobianos no son un buen marcador   de las relaciones clonales, la elevada variedad de perfiles   encontrados podrían reflejar el bajo grado de clonalidad   de las cepas de <i>E. coli</i> comensales estudiadas. Una   heterogeneidad de perfiles de resistencia similar han   sido informados previamente en otros estudios de cepas   no patogénicas de dicha bacteria (14,15).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Al ser este estudio de una región limitada de Lima,   podría ser que estos datos no fueran representativos de   otras regiones del país.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Como conclusión, este informe muestra los altos   niveles de resistencia a antimicrobianos, especialmente   en quinolonas en niños menores de 1 año, en Lima.   Estos datos pueden sugerir un elevado consumo   de antimicrobianos en la comunidad, así como nos   muestran el riesgo inminente de pérdida de eficiencia   de las quinolonas para tratar enfermedades diarreicas   u otras infecciones, se propone la necesidad de buscar   nuevas alternativas de tratamiento.</font></p>      <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">   AGRADECIMIENTOS</font></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Agradecemos a Laura Puyol por su apoyo en la logística del   laboratorio.</font></p>      <p align="justify"><b><i><font size="2" face="Verdana">   Contribuciones de autoría</font></i></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   AIG, CFL, SM, JR participaron en la concepción y diseño del   estudio; AIG, CFL, MM, TJO y JR en el aporte de pacientes   o material de estudio; CFL, TJO y JR en la obtención del   financiamiento; TJO, SM, MJP, JR, y LJdV participaron el   análisis e interpretación de los datos. Todos los autores   participaron de la recolección de resultados, revisión crítica del   manuscrito, aprobación de su versión final.</font></p>      <p align="justify"><b><i><font size="2" face="Verdana">   Conflictos de interés</font></i></b></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Los autores declaran no tener ningún conflicto de interés.</font></p>      <p align="justify"><i><b><font size="2" face="Verdana">   Fuentes de financiamiento</font></b></i></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   Este trabajo fue parcialmente financiado por Agència Catalana   de Cooperació al Desenvolupament proyecto U2006 (LJdV),   Centre de Cooperació per al Desenvolupament - Universitat   Politècnica de Catalunya (LJdV), Agencia Española de   Cooperación Internacional al Desarrollo proyectos numero   A/4892/06 (LJdV), D/019499/08 y D/024648/09 (JR), Fogarty   International Center, National Institute of Health, USA, proyecto   1K01TW007405 (TJO) Sanofi Pasteur y fondos de investigación   del Dr. Lanata, Instituto de Investigación Nutricional, Lima,   Perú. La investigación de JR es financiado por el proyecto   CP05/0130 del FIS (Fondo de Investigaciones Sanitarias,   España).</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">   REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS</font></b></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   1. Organización Mundial de la Salud. Estrategia mundial de   la OMS para contener la resistencia a los antimicrobianos.   Ginebra: OMS; 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628602&pid=S1726-4634201200010001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   2. Ruiz J. Mechanisms of resistance to quinolones: target   alterations, decreased accumulation and DNA gyrase   protection. J Antimicrob Chemother. 2003;51(5):1109-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628604&pid=S1726-4634201200010001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   3. Murray TS, Baltimore RS. Pediatric uses of fluoroquinolone   antibiotics. Pediatric Ann. 2007;36(6):336-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628606&pid=S1726-4634201200010001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   4. Strahilevitz J, Jacoby GA, Hooper DC, Robicsek A. Plasmidmediated   quinolone resistance: a multifaceted threat. Clin   Microbiol Rev. 2009;22(4):664-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628608&pid=S1726-4634201200010001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   5. Tannock GW. Normal microflora. An introduction to   microbes inhabiting the human body. London: Ed-Chapman   and Hall; 1995.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628610&pid=S1726-4634201200010001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   6. Ochoa TJ, Ecker L, Barletta F, Mispireta ML, Gil AI,   Contreras C, et al. Age-related susceptibility to infection   with diarrheagenic <i>Escherichia coli</i> among Infants   from Periurban Areas in Lima, Peru. Clin Infect Dis.   2009;49(11):1694-702.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628612&pid=S1726-4634201200010001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   7. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance   standards for antimicrobial susceptibility testing. Fifteenth   informational supplement. Wayne, PA: CLSI; 2005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628614&pid=S1726-4634201200010001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   8. Bartoloni A, Pallecchi L, Rodriguez H, Fernandez C,   Mantella A, Bartalesi F, et al. Antibiotic resistance in a very   remote Amazonas community. Internat J Antimicrob agents.   2009;33(2):125-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628616&pid=S1726-4634201200010001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   9. Nys S, Okeke IN, Kariuki S, Dinant GJ, Driessen C,   Stobberingh EE. Antibiotic resistance of faecal <i>Escherichia coli</i> from healthy volunteers from eight developing countries.   J Antimicrob Chemother. 2004;54(5):952-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628618&pid=S1726-4634201200010001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   10. Deza J, Sierralta V, León J, Mateo E. Sensibilidad antibiótica   in vitro de Yersinia ruckeri aisladas de Oncorhynchus   “trucha arcoiris” de piscigranja del centro del Perú. XVIII   Reunión Científica del ICBAR. Universidad Nacional Mayor   de San Marcos, Facultad de Ciencias Biológicas. Lima,   Perú. 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628620&pid=S1726-4634201200010001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   11. F àbrega A, Sánchez-Céspedes J, Soto S, Vila J. Quinolone   resistance in the food chain. Int J Antimicrob Agents.   2008;31(4):307-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628622&pid=S1726-4634201200010001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   12. Ochoa TJ, Ruiz J, Molina M, Del Valle LJ, Vargas M, Gil   AI, et al. High frequency of antimicrobial drug resistance of   diarrheagenic <i>Escherichia coli</i> in infants in Peru. Am J Trop   Med Hyg. 2009;81(2):296-301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628624&pid=S1726-4634201200010001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   13. Wirtz VJ, Dreser A, Gonzales R. Trends in antibiotic   utilization in eight Latin American countries, 1997-2007.   Rev Panam Salud Publica. 2010;27(3):219-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628626&pid=S1726-4634201200010001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   14. Pallecchi L, Lucchetti C, Bartoloni A, Bartalesi F, Mantella A,   Gamboa H, et al. Population structure and resistance genes   in antibiotic-resistant bacteria from remote community with   minimal antibiotic exposure. Antimicrob Agents Chemother.   2007;51(4):1179-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628628&pid=S1726-4634201200010001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   15. Domínguez E, Zarazaga M, Sáenz Y, Briñas L, Torres C.   Mechanisms of antibiotic resistance in <i>Escherichia coli</i>   isolates obtained from healthy children in Spain. Microb   Drug Resist. 2002;8(4):321-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2628630&pid=S1726-4634201200010001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   <b>Correspondencia:</b> Joaquim Ruiz</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   <b>Dirección:</b> Ed. CEK, pl1, C/ Rosselló 153, 08036, Barcelona,   España.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   <b>Teléfono:</b> (34) 932275400 ext 4547, fax: (34) 932279853</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   <b>Correo electrónico:</b> <a href="mailto:joruiz&#64clinic.ub.es">joruiz&#64clinic.ub.es</a></font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">   <b>Recibido:</b> 03-11-11 </font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Aprobado:</b> 22-02-12</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">         &nbsp;</font></p>         ]]></body><back>
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